良好的样品制备对于在电泳和 Western 印迹检测中成功分离蛋白条带至关重要。由于蛋白质样品的多样性，因此，没有单一样品制备方法或缓冲液适用于所有类型的样品。然而，以下通用指南和方案应在制备用于蛋白电泳和后续蛋白免疫印迹分析的样品时提供良好的起点。

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重要考虑因素：

  • 为了尽可能降低样品变异性，应保持样品制备工作流程简单，使用针对特定样品类型和靶蛋白进行优化的试剂。
  • 细胞裂解时会破坏细胞膜和细胞器，导致酶活性不受调控，从而降低蛋白产量并导致蛋白降解。为了防止这些不利影响，应向裂解试剂中加入 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 。
  • 一些缓冲液组分可能会干扰所选的凝胶电泳化学系统（如 Tris-甘氨酸，Bis-Tris），并在运行凝胶时产生多种伪影。选择与制备样品的缓冲液兼容的凝胶电泳化学方法是最简单的方法。然而，如果无法更改凝胶电泳化学系统，可能需要进行 样品净化 ，以使样品与给定系统兼容。
  • 为了避免样品量过少或过多，应在电泳前使用兼容的蛋白定量方法测定每份样品的蛋白浓度。

从细胞培养物中制备用于免疫印迹分析的裂解液

材料

细胞裂解缓冲液 （关于推荐信息，请参见下表）上样缓冲液（上样缓冲液）（例如LDS 上样缓冲液，4x，货号 NP0007）
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物（例如 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物，货号 78440 或 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，货号 A32961）可选：样品还原剂（例如 NuPAGE 样品还原剂 (10X)，货号 NP0004）
冰磷酸盐缓冲液 (PBS)（例如磷酸盐缓冲液干粉包，货号 28372）进行非变性 PAGE：非变性上样缓冲液（例如 Tris-甘氨酸非变性上样缓冲液，货号 LC2673）
蛋白定量（例如 Pierce BCA 蛋白定量，货号No 23225） 

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裂解缓冲液推荐

靶蛋白位置推荐缓冲液描述
全细胞 （总蛋白提取）（温和裂解缓冲液，以保留蛋白质-蛋白质相互作用)M-PER 哺乳动物总蛋白提取试剂25mM N-二羟乙基甘氨酸缓冲液 (pH 7.6) 中的非变性去垢剂
全细胞（总蛋白提取)（蛋白为膜结合蛋白、核蛋白或线粒体蛋白)RIPA 裂解缓冲液25 mM Tris-HCl pH 7.6
150 mM NaCl
1% NP-40 或 Triton X-100
1% 脱氧胆酸钠
0.1% SDS
胞质NP-40 细胞裂解缓冲液50 mM Tris, pH 7.4
250 mM NaCl
5 mM EDTA
50 mM NaF
1 mM Na3VO4
1% NP-40

如果使用非哺乳动物细胞，则要探索推荐的样品类型特异性 裂解缓冲液。

流程

1.通过添加蛋白酶和磷酸酶抑制剂制备裂解缓冲液。如果使用 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 100x，则直接向细胞裂解缓冲液中加入 10 µL/mL 的混合物。如果使用 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，请将片剂从小瓶中取出，放入 10 mL 裂解缓冲液，然后涡旋溶解。可选：若要抑制金属蛋白酶，请在 10 µL/mL 裂解缓冲液中加入 EDTA (0.5 M)。

用于贴壁细胞

2.将细胞培养皿放在冰上，小心移除培养基，并使用冰 PBS 洗涤细胞。
3.吸出 PBS，加入冰裂解缓冲液 (每 107 个细胞或 100 mm 反应板约 1 mL；60 mm 反应板约 0.5 mL；6 孔培养板约 200-400 μL)。轻轻摇动或在冰上涡旋 5 分钟。或者：在微量离心管中重悬裂解缓冲液前，可让细胞胰蛋白酶化，并用 PBS 洗涤。
4.收集细胞裂解液，并将其转移至微量离心管中。将样品以 ~14,000×g 离心 15 分钟，收集细胞碎屑。
5.将上清液转移到新的微量离心管中并丢弃沉淀。

对于悬浮培养的细胞

2.以 2,500×g 离心 10 分钟，收集细胞。丢弃上清液。
3.将细胞沉淀重新悬浮于冰 PBS 中，细胞洗涤一次。以 2,500×g 离心 10 分钟，收集细胞。
4.加入冰裂解缓冲液（每 100 mg 约 1 mL 或细胞沉淀反应孔约 100 µL)。将混合物向上和向下移液以重悬沉淀。
5.轻轻摇动混合物 10 分钟。以 ~14,000×g 离心 15 分钟，移除细胞碎屑。
6.将上清液转移至新的微量离心管中，并丢弃沉淀。

使用 BCA 蛋白定量法测定蛋白浓度

7.制备稀释的白蛋白 (BSA) 标准品。或者：使用 预稀释的 BSA 标准品。
8.将 BCA 试剂 A 的 50 个部分与 BCA 试剂 B 的 1 个部分混合（试剂 A:B 为 50:1）来制备工作试剂。
9.用移液管吸取 25 µL 标准品或未知样品复本，加入微孔板孔（工作范围 = 20-2000 µg/mL）。
10.向每个孔中加入 200 µL 工作试剂，并在微孔板振荡器上充分混合 30 秒。
11.盖上微孔板，在 37℃ 下孵育 30 分钟。
12.将微孔板冷却至室温。在酶标仪上测量 562 nm 处或附近的吸光度。
13.测定蛋白浓度。

方案提示

BCA 蛋白检测相比 Bradford 检测法（基于考马斯染料的检测方法）具有独特的优势，因为它们可以兼容包含多达 5％ 去垢剂的样品，并且受蛋白组成差异的影响小得多，从而提供了更大的蛋白间一致性和定量准确性。

制备用于蛋白电泳的样品

变性电泳 (SDS-PAGE)

  1. 在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
SDS/LDS 上样缓冲液 (4X)*2.5 μL2.5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*

* 对于 Tricine 凝胶，推荐使用 Tricine SDS 上样缓冲液。

  • 2.在 70℃ 下加热样品 10 分钟
  • 3.将样品上样至 Bis-Tris，Tris- 乙酸或 Tris-甘氨酸蛋白凝胶上。

方案提示

在含 SDS 的缓冲液中于 100℃ 下加热样品可能导致蛋白质水解。我们建议，在 70℃ 下加热用于变性电泳（还原或非还原状态）的样品 2–10 分钟，以获得理想的结果。切勿加热用于非变性 (native) 电泳的样品。

非变性电泳 (非变性 PAGE)

  1. 在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
非变性上样缓冲液 (2X)5 μL5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*
  • 2.将样品上样至 Tris-甘氨酸或 Tris-乙酸蛋白凝胶上。

制备用于 Western 印迹分析的组织裂解液

材料

细胞裂解缓冲液（关于推荐信息，请参见下表）上样缓冲液（上样缓冲液）（例如LDS 上样缓冲液，4x，货号 NP0007）
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物（例如 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物，货号 78440 或 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，货号 A32961）可选：样品还原剂（例如 NuPAGE 样品还原剂 (10X)，货号 NP0004）
冰磷酸盐缓冲液 (PBS)（例如磷酸盐缓冲液干粉包，货No 28372）进行非变性 PAGE：非变性上样缓冲液（例如 Tris-甘氨酸非变性上样缓冲液，货号 LC2673)
蛋白定量 （例如 Pierce BCA 蛋白定量，货号No 23225） 

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裂解缓冲液推荐

靶蛋白位置建议缓冲液说明
全细胞 (总蛋白提取) T-PER 组织蛋白提取试剂 （温和裂解缓冲液，以保留蛋白质-蛋白质相互作用并尽可能减少变性）含非变性去垢剂的 25 mM N-二羟乙基甘氨酸缓冲液，150 mM 氯化钠 (pH 7.6)
全细胞（总蛋白提取）（蛋白为膜结合蛋白、核蛋白或线粒体蛋白）RIPA 裂解缓冲液 （含有经典的去垢剂，以帮助将蛋白引入溶液）25 mM Tris-HCl pH 7.6
150 mM NaCl
1% NP-40 或 Triton X-100
1% 脱氧胆酸钠
0.1% SDS

流程

1.通过添加蛋白酶和磷酸酶抑制剂制备裂解缓冲液。如果使用 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 100x，则直接向细胞裂解缓冲液中加入 10 µL/mL 的混合物。如果使用 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，请将片剂从小瓶中取出，放入 10 mL 裂解缓冲液，然后涡旋溶解。可选：若要抑制金属蛋白酶，请在 10 µL/mL 裂解缓冲液中加入 EDTA (0.5 M)。
2.在冰上解剖目标组织并称量样品。使用约 50 mg 组织与 1000 µL 冰裂解缓冲液的比值。如果需要浓度更高的蛋白提取物，请使用较少量的裂解缓冲液。
3.向组织样品中加入适量的冰裂解缓冲液，并在冰上匀浆。
4.将样品以 10,000×g 离心 5 分钟，收集细胞/组织碎屑。
5.将上清液转移至新的微量离心管中，并丢弃沉淀。

使用 BCA 蛋白定量法测定蛋白浓度

6.制备稀释的白蛋白 (BSA) 标准品。或者：使用 预稀释的 BSA 标准品。
7.将 BCA 试剂 A 的 50 个部分与 BCA 试剂 B 的 1 个部分混合来制备工作试剂（试剂 A:B 为 50:1）。
8.用移液管吸取 25 µL 标准品或未知样品复本，加入微孔板孔（工作范围 = 20-2,000 µg/mL）。
9.向每个孔中加入 200 µL 工作试剂，并在微孔板振荡器上充分混合 30 秒。
10.盖上微孔板，在 37℃ 下孵育 30 分钟。
11.将微孔板冷却至室温。在酶标仪上测量 562 nm 处或附近的吸光度。
12.测定每种细胞裂解物的蛋白浓度。测定蛋白的上样量（推荐 50 μL/孔）。

方案提示

BCA 蛋白检测相比 Bradford 检测法（基于考马斯染料的检测方法）具有独特的优势，因为它们可以兼容包含多达 5％ 去垢剂的样品，并且受蛋白组成差异的影响小得多，从而提供了更大的蛋白间一致性和定量准确性。

制备用于蛋白电泳的样品

变性电泳 (SDS-PAGE)

  • 1.在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
SDS/LDS 上样缓冲液 (4X)*2.5 μL2.5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*

* 对于 Tricine 凝胶，推荐使用 Tricine SDS 上样缓冲液。

  • 2.在 70℃ 下加热样品 10 分钟
  • 3.将样品上样至 Bis-Tris，Tris-乙酸或 Tris-甘氨酸蛋白凝胶上。

非变性电泳 (非变性 PAGE)

  • 1.在非变性上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
非变性样品缓冲液 (2X)5 μL5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*
  • 2.将样品上样至 Tris-甘氨酸或 Tris-乙酸蛋白凝胶上。

方案提示

在含 SDS 的缓冲液中于 100℃ 下加热样品可能导致蛋白质水解。我们建议，在 70℃ 下加热用于变性电泳（还原或非还原状态）的样品 2–10 分钟，以获得理想的结果。请勿加热用于非变性 (native) 电泳的样品。

方案提示

请勿储存还原样品。制备样品储备液（如示例表，还原剂除外），并将其储存在 -20ºC 或 -80ºC 温度下。使用前使用还原剂 (10X) 还原样品。

细胞培养样品制备

从细胞培养物中制备用于免疫印迹分析的裂解液

材料

细胞裂解缓冲液 （关于推荐信息，请参见下表）上样缓冲液（上样缓冲液）（例如LDS 上样缓冲液，4x，货号 NP0007）
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物（例如 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物，货号 78440 或 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，货号 A32961）可选：样品还原剂（例如 NuPAGE 样品还原剂 (10X)，货号 NP0004）
冰磷酸盐缓冲液 (PBS)（例如磷酸盐缓冲液干粉包，货号 28372）进行非变性 PAGE：非变性上样缓冲液（例如 Tris-甘氨酸非变性上样缓冲液，货号 LC2673）
蛋白定量（例如 Pierce BCA 蛋白定量，货号No 23225） 

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裂解缓冲液推荐

靶蛋白位置推荐缓冲液描述
全细胞 （总蛋白提取）（温和裂解缓冲液，以保留蛋白质-蛋白质相互作用)M-PER 哺乳动物总蛋白提取试剂25mM N-二羟乙基甘氨酸缓冲液 (pH 7.6) 中的非变性去垢剂
全细胞（总蛋白提取)（蛋白为膜结合蛋白、核蛋白或线粒体蛋白)RIPA 裂解缓冲液25 mM Tris-HCl pH 7.6
150 mM NaCl
1% NP-40 或 Triton X-100
1% 脱氧胆酸钠
0.1% SDS
胞质NP-40 细胞裂解缓冲液50 mM Tris, pH 7.4
250 mM NaCl
5 mM EDTA
50 mM NaF
1 mM Na3VO4
1% NP-40

如果使用非哺乳动物细胞，则要探索推荐的样品类型特异性 裂解缓冲液。

流程

1.通过添加蛋白酶和磷酸酶抑制剂制备裂解缓冲液。如果使用 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 100x，则直接向细胞裂解缓冲液中加入 10 µL/mL 的混合物。如果使用 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，请将片剂从小瓶中取出，放入 10 mL 裂解缓冲液，然后涡旋溶解。可选：若要抑制金属蛋白酶，请在 10 µL/mL 裂解缓冲液中加入 EDTA (0.5 M)。

用于贴壁细胞

2.将细胞培养皿放在冰上，小心移除培养基，并使用冰 PBS 洗涤细胞。
3.吸出 PBS，加入冰裂解缓冲液 (每 107 个细胞或 100 mm 反应板约 1 mL；60 mm 反应板约 0.5 mL；6 孔培养板约 200-400 μL)。轻轻摇动或在冰上涡旋 5 分钟。或者：在微量离心管中重悬裂解缓冲液前，可让细胞胰蛋白酶化，并用 PBS 洗涤。
4.收集细胞裂解液，并将其转移至微量离心管中。将样品以 ~14,000×g 离心 15 分钟，收集细胞碎屑。
5.将上清液转移到新的微量离心管中并丢弃沉淀。

对于悬浮培养的细胞

2.以 2,500×g 离心 10 分钟，收集细胞。丢弃上清液。
3.将细胞沉淀重新悬浮于冰 PBS 中，细胞洗涤一次。以 2,500×g 离心 10 分钟，收集细胞。
4.加入冰裂解缓冲液（每 100 mg 约 1 mL 或细胞沉淀反应孔约 100 µL)。将混合物向上和向下移液以重悬沉淀。
5.轻轻摇动混合物 10 分钟。以 ~14,000×g 离心 15 分钟，移除细胞碎屑。
6.将上清液转移至新的微量离心管中，并丢弃沉淀。

使用 BCA 蛋白定量法测定蛋白浓度

7.制备稀释的白蛋白 (BSA) 标准品。或者：使用 预稀释的 BSA 标准品。
8.将 BCA 试剂 A 的 50 个部分与 BCA 试剂 B 的 1 个部分混合（试剂 A:B 为 50:1）来制备工作试剂。
9.用移液管吸取 25 µL 标准品或未知样品复本，加入微孔板孔（工作范围 = 20-2000 µg/mL）。
10.向每个孔中加入 200 µL 工作试剂，并在微孔板振荡器上充分混合 30 秒。
11.盖上微孔板，在 37℃ 下孵育 30 分钟。
12.将微孔板冷却至室温。在酶标仪上测量 562 nm 处或附近的吸光度。
13.测定蛋白浓度。

方案提示

BCA 蛋白检测相比 Bradford 检测法（基于考马斯染料的检测方法）具有独特的优势，因为它们可以兼容包含多达 5％ 去垢剂的样品，并且受蛋白组成差异的影响小得多，从而提供了更大的蛋白间一致性和定量准确性。

制备用于蛋白电泳的样品

变性电泳 (SDS-PAGE)

  1. 在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
SDS/LDS 上样缓冲液 (4X)*2.5 μL2.5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*

* 对于 Tricine 凝胶，推荐使用 Tricine SDS 上样缓冲液。

  • 2.在 70℃ 下加热样品 10 分钟
  • 3.将样品上样至 Bis-Tris，Tris- 乙酸或 Tris-甘氨酸蛋白凝胶上。

方案提示

在含 SDS 的缓冲液中于 100℃ 下加热样品可能导致蛋白质水解。我们建议，在 70℃ 下加热用于变性电泳（还原或非还原状态）的样品 2–10 分钟，以获得理想的结果。切勿加热用于非变性 (native) 电泳的样品。

非变性电泳 (非变性 PAGE)

  1. 在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
非变性上样缓冲液 (2X)5 μL5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*
  • 2.将样品上样至 Tris-甘氨酸或 Tris-乙酸蛋白凝胶上。
组织样品制备

制备用于 Western 印迹分析的组织裂解液

材料

细胞裂解缓冲液（关于推荐信息，请参见下表）上样缓冲液（上样缓冲液）（例如LDS 上样缓冲液，4x，货号 NP0007）
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物（例如 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物，货号 78440 或 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，货号 A32961）可选：样品还原剂（例如 NuPAGE 样品还原剂 (10X)，货号 NP0004）
冰磷酸盐缓冲液 (PBS)（例如磷酸盐缓冲液干粉包，货No 28372）进行非变性 PAGE：非变性上样缓冲液（例如 Tris-甘氨酸非变性上样缓冲液，货号 LC2673)
蛋白定量 （例如 Pierce BCA 蛋白定量，货号No 23225） 

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裂解缓冲液推荐

靶蛋白位置建议缓冲液说明
全细胞 (总蛋白提取) T-PER 组织蛋白提取试剂 （温和裂解缓冲液，以保留蛋白质-蛋白质相互作用并尽可能减少变性）含非变性去垢剂的 25 mM N-二羟乙基甘氨酸缓冲液，150 mM 氯化钠 (pH 7.6)
全细胞（总蛋白提取）（蛋白为膜结合蛋白、核蛋白或线粒体蛋白）RIPA 裂解缓冲液 （含有经典的去垢剂，以帮助将蛋白引入溶液）25 mM Tris-HCl pH 7.6
150 mM NaCl
1% NP-40 或 Triton X-100
1% 脱氧胆酸钠
0.1% SDS

流程

1.通过添加蛋白酶和磷酸酶抑制剂制备裂解缓冲液。如果使用 Halt 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 100x，则直接向细胞裂解缓冲液中加入 10 µL/mL 的混合物。如果使用 Pierce 蛋白酶和磷酸酶抑制剂片剂，请将片剂从小瓶中取出，放入 10 mL 裂解缓冲液，然后涡旋溶解。可选：若要抑制金属蛋白酶，请在 10 µL/mL 裂解缓冲液中加入 EDTA (0.5 M)。
2.在冰上解剖目标组织并称量样品。使用约 50 mg 组织与 1000 µL 冰裂解缓冲液的比值。如果需要浓度更高的蛋白提取物，请使用较少量的裂解缓冲液。
3.向组织样品中加入适量的冰裂解缓冲液，并在冰上匀浆。
4.将样品以 10,000×g 离心 5 分钟，收集细胞/组织碎屑。
5.将上清液转移至新的微量离心管中，并丢弃沉淀。

使用 BCA 蛋白定量法测定蛋白浓度

6.制备稀释的白蛋白 (BSA) 标准品。或者：使用 预稀释的 BSA 标准品。
7.将 BCA 试剂 A 的 50 个部分与 BCA 试剂 B 的 1 个部分混合来制备工作试剂（试剂 A:B 为 50:1）。
8.用移液管吸取 25 µL 标准品或未知样品复本，加入微孔板孔（工作范围 = 20-2,000 µg/mL）。
9.向每个孔中加入 200 µL 工作试剂，并在微孔板振荡器上充分混合 30 秒。
10.盖上微孔板，在 37℃ 下孵育 30 分钟。
11.将微孔板冷却至室温。在酶标仪上测量 562 nm 处或附近的吸光度。
12.测定每种细胞裂解物的蛋白浓度。测定蛋白的上样量（推荐 50 μL/孔）。

方案提示

BCA 蛋白检测相比 Bradford 检测法（基于考马斯染料的检测方法）具有独特的优势，因为它们可以兼容包含多达 5％ 去垢剂的样品，并且受蛋白组成差异的影响小得多，从而提供了更大的蛋白间一致性和定量准确性。

制备用于蛋白电泳的样品

变性电泳 (SDS-PAGE)

  • 1.在适当的上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
SDS/LDS 上样缓冲液 (4X)*2.5 μL2.5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*

* 对于 Tricine 凝胶，推荐使用 Tricine SDS 上样缓冲液。

  • 2.在 70℃ 下加热样品 10 分钟
  • 3.将样品上样至 Bis-Tris，Tris-乙酸或 Tris-甘氨酸蛋白凝胶上。

非变性电泳 (非变性 PAGE)

  • 1.在非变性上样缓冲液中制备样品，使得上样缓冲液的最终浓度为 1X。根据 微孔上样量缩放以下用量。
试剂名称还原样品非还原样品
蛋白样本x μLx μL
非变性样品缓冲液 (2X)5 μL5 μL
还原剂 (10X)1 μL—
去离子水加至 10 μL加至 10 μL
总容量10 μL*10 μL*
  • 2.将样品上样至 Tris-甘氨酸或 Tris-乙酸蛋白凝胶上。

方案提示

在含 SDS 的缓冲液中于 100℃ 下加热样品可能导致蛋白质水解。我们建议，在 70℃ 下加热用于变性电泳（还原或非还原状态）的样品 2–10 分钟，以获得理想的结果。请勿加热用于非变性 (native) 电泳的样品。

方案提示

请勿储存还原样品。制备样品储备液（如示例表，还原剂除外），并将其储存在 -20ºC 或 -80ºC 温度下。使用前使用还原剂 (10X) 还原样品。

仅供科研使用，不可用于诊断目的。