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RNA 干扰 (RNAi) 是用于研究细胞基础生物学的强有力工具,可通过基因表达敲低来研究各种细胞类型中的蛋白功能。人们曾将 RNAi 视为仅在选定实验室使用的技术,而 RNAi 现已成为研究基因功能的必需技术。RNAi 已成为用于蛋白敲低研究、表现型分析、功能恢复、通路分析、体内敲低和药物靶点发现的重要工具。
核糖核酸干扰(A. Fire 和 C. Mello 等人, 1998)。
短干扰 RNA。siRNA 是具有 21 – 25 碱基对的 dsRNA,且带有双核苷酸的 3'突出段,在 RNA 干扰通路中由 Dicer 从较长的 dsRNA 加工而来。通过引入合成的 siRNA,可以在哺乳动物细胞中诱导 RNAi。siRNA 也可来自内源性前体细胞。
短发夹 RNA;也称为短干扰发夹。shRNA 用于在基于载体的方法中为细胞提供 siRNA,以实现稳定的基因沉默。采用 Pol III 型强启动子驱动靶序列转录,形成长度可变的发夹和茎环,然后通过细胞的 siRNA 机制进行处理。shRNA 进入细胞后,可以通过 RNAi 下调具有互补序列的基因表达。
表达小分子 RNA 的载体,可用于 RNAi。小分子 RNA 是长度为 19 – 23 个核苷酸的单链 RNA,其单链前体转录本含有碱基不完全配对的发夹结构。miRNA 在沉默复合物中的功能即使与 RISC 不完全相同,但也类似(参见下文)。
经过化学修饰的 siRNA 分子。
RNA 诱导沉默复合物 (RISC)。由蛋白质和dsRNA 组成的核酸酶复合物,可以靶向并切割 RISC 复合物中与 siRNA 互补的内源性 mRNA。
在导入 siRNA 或 d-siRNA 库后,如果一个或几个未特异性靶定的基因表现出基因功能缺失,即为脱靶效应。该效应可能由 siRNA 的有义链介导,可能导致启动无关基因的功能丧失反应。如果脱靶效应具有足够的同源性从而可敲低非靶基因的表达,则脱靶效应也可作为特异性 siRNA 反义链的继发效应发生。
有两类小 RNA 分子在 RNAi 中发挥功能。第一类是合成的短干扰 RNA (siRNA) 分子,它们可以靶向 mRNA 切割,可有效敲低目标基因的表达。第二类是小分子 RNA (miRNA) 分子,它们是天然存在的单链 RNA,长度为 19 – 22 个核苷酸,通过结合靶标 mRNA 的 3'非翻译区 (UTR) 并抑制翻译,从而调节基因表达(Ambros,2004)。
有多种诱导 RNAi 的方式:合成分子、RNAi 载体和体外切割(下文图 1)。在哺乳动物细胞中,dsRNA 的短片段(即短干扰 RNA)可以启动靶细胞 mRNA 的特异性降解。在此过程中,siRNA 的反义链成为多蛋白复合物或 RNA 诱导沉默复合物 (RISC) 的一部分,然后可识别相应的 mRNA,并在特定位点进行切割。随后,这条经过切割的信使被靶向降解,最终导致蛋白表达缺失。
图 1:哺乳动物细胞中的 RNAi 敲低方法。
RNA 聚合酶 II 和 III 均转录含有 miRNA 的基因,生成较长的初级转录本 (pri-miRNA),该转录本通过 RNase III 型 Drosha 酶的加工,可以获得长度为 70 – 90 碱基对的发夹结构 (pre-miRNA)。Pre-miRNA 发夹会转移至细胞质,在 RNase III Dicer 蛋白的作用下进一步加工为短双链体 miRNA,长度为 19 – 22 个核苷酸。miRNA 双链体由 RNA 诱导沉默复合物 (RISC) 识别,RISC 是一种多蛋白核酸酶复合物,且两条链的其中一条(即引导链)可以帮助该蛋白复合物识别其同源 mRNA 转录本。RISC-miRNA 复合物通常与序列同源性不佳区域中靶标 mRNA 的 3' UTR 相互作用,从而抑制蛋白质合成,但具体机制尚未完全阐明(下文图 2)。
植物 miRNA 可以通过精确或几乎精确的互补碱基配对与靶标 mRNA 序列结合,从而直接切割并破坏 mRNA(Rhoades 等人,2002;Chen,2005)。与 RNA 干扰 (RNAi) 中发生的机制类似,靶标 mRNA 上单磷酸二酯键的切割发生于第 10 个和第 11 个碱基之间(Elbashir 等人,2001)。不过,迄今为止,几乎所有研究动物的 miRNA 都未与其 mRNA 靶标完美互补,并似乎会在抑制蛋白质合成的同时维持 mRNA 靶标的稳定性(Ambros,2004)。研究表明,转录本可能受多个 miRNA 调控,单个 miRNA 可能靶向多个转录本。研究显示,多达三分之一的人类基因可能受 miRNA 调控(Lim 等人,2003)。尽管已经在各种生物体中发现了数以百计的 miRNA,但人们对其细胞功能仍知之甚少。miRNA 具有体积小、缺乏多聚腺苷酸尾以及易与序列同源性不佳的 mRNA 靶标结合等独特物理属性,导致对它们的研究变得难以捉摸和具有挑战性。
图2:miRNA 的生物发生和功能。小分子 RNA 转录本由 RNA 聚合酶 II 和 III 生成,经 RNase III 酶 Drosha(细胞核)和 Dicer(细胞质)处理后,获得长度为 19 – 22 个核苷酸的 miRNA 双链体。双链体的其中一条链参与形成 RISC 复合物,该复合物调控蛋白表达。
RNAi(RNA 干扰)过程可通过 siRNA 或 miRNA 调控。这两种 RNA 均由 Dicer 酶在细胞内完成加工,并形成 RISC 复合物(RNA 诱导沉默复合物)。但是,两者之间存在微妙差异。
siRNA 是外源性双链 RNA,可以经化学合成后直接转染至细胞内,或者将表达短发夹 RNA (shRNA) 的载体导入细胞后在细胞内生成,其中,短发夹 RNA 是 siRNA 的前体分子。另一方面,miRNA 为单链 RNA,来源于较大 RNA 分子上内含子中的内源性非编码 RNA。然而,shRNA 形成功能性 siRNA 的加工涉及与天然加工基因组编码的 miRNA 相同的细胞内 RNAi 机制,而 miRNA 通过调节 mRNA 稳定性、翻译和染色质结构进行细胞基因表达调控(Hutvagner 和 Zamore,2002)。
siRNA 和 miRNA 之间的另一差异在于,siRNA 在动物体内一般可与 mRNA 靶标实现完全匹配和特异性结合,而 miRNA 由于无法实现完全配对,可抑制多种不同 mRNA 序列的翻译。在植物中,miRNA 往往具有更匹配的互补序列,从而诱导 mRNA 切割,而不仅仅是抑制翻译。
siRNA 和 miRNA 均可通过 RNA 诱导的转录沉默 (RITS) 过程,在表观遗传学方面发挥作用。同样,鉴于它们在基因表达调控方面的作用,二者也都是重要的治疗靶标。
siRNA | miRNA | |
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来源 | 天然存在于植物和低等动物中。但目前尚不清楚是否天然存在于哺乳动物体内。 | 天然存在于植物和动物中。 |
构造 | 双链 | 单链 |
长度 | 21 – 22 个核苷酸 | 19 – 25 个核苷酸 |
与靶标 mRNA 的互补性 | 100% 完全匹配;因此,siRNA 可以敲低特异性基因,预期几乎无脱靶现象。 | 不精确;因此,单个 miRNA 可靶向多达数百种 mRNA。 |
生物发生 | 调控表达其自身的相同基因。 | 由生成 miRNA 的基因表达,但调控的基因 (mRNA) 并非只有表达 miRNA 的基因。 |
措施 | 切割 mRNA | 抑制 mRNA 翻译 |
功能 | 在无抗体或细胞介导免疫的动植物中发挥基因沉默保护功能。 | 基因 (mRNA) 调控因子(抑制剂) |
用途 | siRNA 作为敲低基因的重要工具,几乎每个分子生物学实验室都在使用。部分 siRNA 还作为潜在的治疗性制剂在临床试验中使用。 | 其具有潜在的治疗用途,可用作药物靶标或药物制剂。miRNA 的表达水平可用作潜在的诊断工具和生物标记物。 |
* 表格摘自 Mack (2007)
仅供科研使用,不可用于诊断目的。