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昆虫细胞提供高水平蛋白表达,其翻译后修饰方法类似于哺乳动物细胞,易于扩展,经过简化的细胞生长容易适应高密度悬浮培养以供大规模表达。哺乳动物系统中存在的大多数翻译后修饰通路也出现在昆虫细胞中,与在酵母或其他真核细胞中表达相比,可产生与天然哺乳动物蛋白质更具抗原性、免疫原性且功能相似的重组蛋白。杆状病毒表达系统是功能强大且通用的递送和表达载体,适合在昆虫细胞中进行高水平重组蛋白表达。据报告,使用杆状病毒表达系统的表达水平高达 500 mg/L。
赛默飞世尔科技提供各种杆状病毒系统(表 3.1)以满足您的需求:
系统 | 宿主 | 分泌信号 | 位置 | 纯化 | 抗原决定簇 | 促进剂 | 表达 /诱导剂 | 优势 |
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Baculo-Direct 系统 | Sf9、Sf21 或 High Five 细胞 | – | N 端或 C 端 | 6xHis | V5 | 多角体蛋白 | 感染 | 快速简便的重组杆状病毒生成方法;高通量的理想选择 |
Bac-to-Bac 或 Bac-to-Bac HBM 系统 | Sf9、Sf21 或 High Five 细胞 | 蜜蜂蜂毒素 | N-端 | 6xHis | – | 多角体蛋白或 P10 | 感染生产 | 快速杆状病毒生成;简便蓝/白斑筛选重组菌落 |
Bac-N-Blue 系统 | Sf9、Sf21 或 High Five 细胞 | 蜜蜂蜂毒素 | C-端 | 6xHis | Xpress V5 | 多角体蛋白 | 感染 | 用于高水平重组蛋白生产的经典且可信表达系统 |
DES 表达系统 | S2 细胞 | BIP | C-端 | 6xHis | V5 | MT 或 Ac5 | CuSO4 或组成型 | 用于高水平重组蛋白生产的经典且可信表达系统 |
昆虫细胞中蛋白质的表达高峰取决于多种因素,包括:多重性感染(MOI)、表达时间和所表达的特异性蛋白。您的系统优化指南包括使用 5-10 的 MOI 以及表达时间为 48 – 72 小时。由于高病毒载量可导致细胞过程故障,因此在 72 小时后表达的蛋白质可能出现畸变。
昆虫细胞的病毒感染通常会经历 3 个阶段,可以使用放大 40 倍至 400 倍的倒置相位显微镜目视观察。病毒感染的各个阶段(假定转染效率高)为:
制备病毒储备液后,强烈建议测定储备液的滴度。您可以进行噬菌斑测定确定病毒储备液的滴度。进行噬菌斑测定的主要步骤如下:
在进行此项检测时,我们建议:
使用此方程式计算病毒滴度:
PFU/mL = 斑块数量(PFU)/稀释因子 x 接种 mL
我们建议使用滴度为 ≥1 x 108 PFU/mL 的病毒储备液进行表达研究。为扩增您的病毒储备液,请在 0.05 至 0.1 的 MOI 范围内感染细胞(MOI 定义为每个细胞的病毒颗粒数量)。备注:如果您尚未确定 P1 病毒储备液的滴度,您可以假定滴度范围为 1 x 106 至 1 x 107 PFU/mL。
赛默飞世尔科技 Gibco 昆虫培养基精心调配的配方可实现最高生长率和蛋白产率。这些培养基与 Gibco 预适应的细胞系(表 3.2)联用,可提供一种便捷系统,从而为您节省时间和工作量。
昆虫细胞对环境因素非常敏感。除化学和营养培养因素外,物理因素也会影响昆虫细胞生长;因此,需要进行优化来尽可能提高细胞生长。
培养昆虫细胞时,请考虑以下因素:
有关昆虫细胞培养的更多信息,请参阅 《杆状病毒表达载体系统(BEVS)和昆虫细胞培养技术指南》。
温度 | 粘附培养 | 悬浮培养液 | 含血清培养基 | SFM | 抗生素 | CO2-V | |
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Sf9 | 27℃ ± 1℃ | 是 | 是 | Grace 补充(TNM-FH)含 10% 热灭活(HI)FBS;添加 0.1% Pluronic F-68 用于悬浮培养液 | Sf-900 II SFM SF-900 III SFM | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
Mimic Sf9 | 27℃ ± 1℃ | 是 | 是 | Grace 补充(TNM-FH)含 10% HI FBS;添加 0.1% Pluronic F-68 用于悬浮培养液 | 否 | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
Sf21 | 27℃ ± 1℃ | 是 | 是 | Grace 补充(TNM-FH)含 10% HI FBS;添加 0.1% Pluronic F-68 用于悬浮培养液 | Sf-900 II SFM SF-900 III SFM | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
High Five | 27℃ ± 1℃ | 是/否 | 是 | 否 | 添加谷氨酰胺后表达五种 SFM | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
S2 | 22°C – 24°C | 是/否 | 是 | 补充了 HI FBS 的 Schneider 培养基 | 果蝇 SFM | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
D. Mel2 | 22°C – 24°C | 是/否 | 是 | 否 | 果蝇 SFM | 青霉素/链锁状球菌 | 否 |
BaculoDirect 杆状病毒表达系统使用快速 1 小时 Gateway 重组反应,生成必要的转染杆粒(图 3.1),有助于节省生产重组杆状病毒所需的天数。通常可在不到一周内分离得到纯化的杆状病毒BaculoDirect 系统的主要优势包括:
请注意,该 DNA 为线性 DNA ,因此生成非重组病毒的可能性极小。
我们的工程化 BaculoDirect 线性 DNA 包含 attR 位点,用于将您的目标基因重组克隆至 Invitrogen Gateway 入门克隆中。只需将入门克隆与 BaculoDirect 线性 DNA 和 Invitrogen Gateway LR Clonase 酶混合,孵育 1 小时,随后转染 Sf9 或 Sf21 昆虫细胞以产生重组病毒。由于转染效率较低,我们不建议使用 Invitrogen High Five 细胞来生成病毒储备液。在生成高滴度病毒储备液后,您可以使用 Sf9、Sf21、High Five 或 Invitrogen Mimic Sf9 细胞进行蛋白表达。无需进行细菌转化和大杆粒分离或共转染转移载体和线性杆状病毒 DNA 进入昆虫细胞。因此,手动操作时间大大缩短,可在 1 周内分离得到纯化的杆状病毒。
BaculoDirect 线性 DNA 旨在用于简单的重组杆状病毒生成和昆虫细胞表达(图 3.2)。除 attR 位点以快速 Gateway 重组克隆外,骨架中还包含强多角体蛋白启动子,以实现高蛋白表达,并含有 C 端或 N 端 6xHis 和 V5 标签,用于检测和纯化。
Bac-to-Bac 杆状病毒表达系统依赖于通过 大肠杆菌 位点特异性转位而不是昆虫细胞中的同源重组进行的重组杆状病毒生成生产重组杆状病毒。pFastBac 载体表达盒与 DH10Bac 大肠杆菌 中的亲本杆粒重组,以形成表达杆粒。亲本杆粒包含 lacZ α 互补因子,可用于阳性重组体的高效蓝/白斑筛选。然后,杆状病毒质粒转染到昆虫细胞中以生成重组杆状病毒颗粒(图 3.3)。
Bac-to-Bac 表达系统的主要优势包括:
该 pFastBac 载体可提供强多角体蛋白启动子以用于蛋白表达,以及大型多克隆位点以简化克隆。Invitrogen Bac-to-Bac HBM TOPO 分泌表达系统能够通过蜜蜂蜂毒肽(HBM)分泌信号实现分泌蛋白的表达,适用于需要存在分泌信号才可进行糖基化的毒性蛋白和糖蛋白。此外,杆状病毒分泌的糖蛋白也可以很容易地在 体外去糖基化—这是蛋白质结晶的重要特征。关于杆状病毒的包裹限制,杆状病毒杆将根据包裹 DNA 的需要继续延长。因此,该系统理论上可以容纳数百千碱基。标准克隆技术将限制插入物大小,然后包裹限制才会成为问题。
存在于 Invitrogen Bac-N-Blue 转染试剂盒 中的 Bac-N-Blue 线性 DNA 专为与 pBlueBac 和 pMelBac 载体重组而设计。重组病毒具有全长、功能性 lacZ 基因,可产生蓝色斑块。这便于鉴别和纯化。Bac-N-Blue 线性 DNA 可与任何基于多角体蛋白启动子的杆状病毒转移载体配合使用。DNA 在三个位点进行线性化,其中一个位于对病毒增殖至关重要的基因中。这导致非重组病毒的减少,有助于使重组病毒的选择和纯化变得简单。
DES 系统具有多种优势,包括:
通过将 DES 表达载体与选择载体 pCoBlast 或 pCoHygro 共转染,生成稳定 S2 细胞系(图 3.4)。当表达构建体位于 S2 细胞内,含有您目标基因的表达质粒的数百个拷贝将自发整合至基因组中。在选择几周后,您可以建立稳定表达高水平蛋白的多克隆细胞系。
仅供科研使用,不可用于诊断目的。